|
ВАЗ-2110 () (ВАЗ-2110, 2110-01, 2110-02, 21102, 21102-01, 21102-02, 211026, 21103, 211036)- описание, характеристики, история.
ВАЗ — 2110 — пятиместный седан. Начало выпуска 1996 год. На этом автомобиле может применяться один из двух вариантов двигателя с электронным многоточечным впрыском (на каждый цилиндр своя форсунка) и электронной системой зажигания. 21102 — Двигатель рабочим объемом 1,5 л. с 8 клапанами обеспечивающий достаточные показатели по мощности (56 кВт) и крутящему моменту (118 Нм), при умеренном расходе топлива. 21103 — Двигатель рабочим объемом 1,5 л. с 16 клапанами, обеспечивающий повышенные показатели по мощности (69 кВт) и крутящему моменту (130 Нм) позволяющими иметь автомобилю улучшенные динамические качества
В настоящее время модель называется «Лада 110»
МОДИФИКАЦИИ
2110
Тип: Седан
Рабочий объем цилиндров: 1 500
Тип двигателя: Карбюраторный с бесконтактной системой зажигания
Расположение органов управления: Левое
Исполнение: «Норма»
2110-01
Тип: Седан
Рабочий объем цилиндров: 1 500
Тип двигателя: Карбюраторный с микропроцессорной системой зажигания
Расположение органов управления: Левое
Исполнение: «Люкс»
2110-02
Тип: Седан
Рабочий объем цилиндров: 1 500
Тип двигателя: Карбюраторный с микропроцессорной системой зажигания
Расположение органов управления: Левое
Исполнение: «Большой люкс»
21102
Тип: Седан
Рабочий объем цилиндров: 1 500
Тип двигателя: 8-клапанный двигатель с распределенным впрыском топлива
Расположение органов управления: Левое
Исполнение: «Норма»
21102-01
Тип: Седан
Рабочий объем цилиндров: 1 500
Тип двигателя: 8-клапанный двигатель с распределенным впрыском топлива
Расположение органов управления: Левое
Исполнение: «Люкс»
21102-02
Тип: Седан
Рабочий объем цилиндров: 1 500
Тип двигателя: 8-клапанный двигатель с распределенным впрыском топлива
Расположение органов управления: Левое
Исполнение: «Большой люкс»
211026
Тип: Седан
Рабочий объем цилиндров: 1 500
Тип двигателя: 8-клапанный двигатель с распределенным впрыском топлива
Расположение органов управления: Правое
Исполнение: «Люкс»
21103
Тип: Седан
Рабочий объем цилиндров: 1 500
Тип двигателя: 16-клапанный двигатель с распределенным впрыском топлива
Расположение органов управления: Левое
Исполнение: «Люкс»
211036
Тип: Седан
Рабочий объем цилиндров: 1 500
Тип двигателя: 16-клапанный двигатель с распределенным впрыском топлива
Расположение органов управления: Правое
Исполнение: «Люкс»
ТЕХНИЧЕСКИЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ
Габаритные размеры, мм: | |
---|---|
Длина | 4263 |
Ширина | 1676 |
Высота | 1430 |
База | 2490 |
Колея: | |
Передних колес | 1400 |
Задних колес | 1370 |
Грузоподъемность | 475 |
Объем багажного отделения, дм. кв. | 450 |
Высота | 1430 |
Коэффициент аэродинамического сопротивления | 0,3 |
Номинальная мощность, кВт(DIN) при об/мин | 56/5600 — 69/5600 |
Крутящий момент, Нм, при об/мин | 118/3000 — 130/3600 |
Масса в снаряженном состоянии, кг | 1020 — 1080 |
Максимальная скорость, км/ч | 170 — 185 |
Время разгона до 100 км/ч, сек | 14 — 12 |
Расход топлива на 100 км, л: | |
при 90 км/ч | 5,2 — 5,0 |
при 120 км/ч | 6,6 — 6,3 |
городской цикл | 8,9 — 8,8 |
Шины | 175/70 R13 — 175/65 R14 |
Уровень шума в салоне, db(A) при скорости 100 км/ч | 72 |
Нормы по токсичности | R-83, США-83, США-93 |
Выделение и характеристика бактерий, разлагающих целлюлозу, обитающих в компостах из опилок и кофейных остатков
1. Adhikary RK, Barua P, Bordoloi DN. Влияние микробной предварительной обработки на деградацию питательного субстрата грибов. Int Biodeterior Biodegrad. 1992; 30: 233–241. [Google Scholar]
2. Бартли Т.Д., Мерфи-Холланд К., Эвели Д.Э. Способ обнаружения и дифференциации компонентов целлюлазы в полиакриламидных гелях. Анальная биохимия. 1984; 140: 157–161. [PubMed] [Академия Google]
3. Béra-Maillet C, Ribot Y, Forano E. Разлагающие волокна системы различных штаммов рода Fibrobacter . Appl Environ Microbiol. 2004; 70: 2172–2179. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
4. Cahyani VR, Matsuya K, Asakawa S, Kimura M. Последовательность и филогенетический состав бактериальных сообществ, ответственных за процесс компостирования рисовой соломы, оцененный с помощью анализа PCR-DGGE. Почвоведение Растениеводство. 2003; 49: 619–630. [Google Scholar]
5. Chen H, Li X.-L, Ljungdahl LG. Секвенирование 1,3-1,4-β-D-глюканазы (лихеназы) анаэробного гриба Orpinomyces штамм PC-2: свойства фермента, выраженные в Escherichia coli , и свидетельство того, что ген имеет бактериальное происхождение. J Бактериол. 1997; 179:6028–6034. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [Google Scholar]
6. Chidthaisong A, Conrad R. Характер неметаногенной и метаногенной деградации целлюлозы в бескислородной почве рисового поля. FEMS Microbiol Ecol. 2000; 31: 87–94. [PubMed] [Google Scholar]
7. Чо Э.-А., Ли Дж.-С., Ли К.С., Юнг Х.-С., Пан Дж.-Г., Пьюн Ю.-Р. Cohnella laeviribosi sp. nov., выделенный из вулканического пруда. Int J Syst Evol Microbiol. 2007; 57: 2902–2907. [PubMed] [Google Scholar]
8. Coman G, Cotarlet M, Bahrim G, Stougaard P. Повышение эффективности скрининга стрептомицетов, способных продуцировать глюканазы, с использованием нерастворимых хромогенных субстратов. рум. Биотехнолог. лат. 2008;13(6) приложение:20–25. [Google Scholar]
9. Doi RH. Целлюлазы мезофильных микроорганизмов: продуценты целлюлосом и нецеллюлозы. Энн NY Acad Sci. 2008; 1125: 267–279.. [PubMed] [Google Scholar]
10. Dubos RJ. Разложение целлюлозы аэробными бактериями. J Бактериол. 1928; 15: 223–234. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
11. Эйда М.Ф., Нагаока Т., Васаки Дж., Коно К. Оценка целлюлозолитических и гемицеллюлозолитических способностей грибов, выделенных из остатков кофе и компостов из опилок. Микробы Окружающая среда. 2011;26:220–227. [PubMed] [Google Scholar]
12. Эль-Рефаи А.-М.Х., Аталла М.М., Э1-Сафти Х.А. Микробное образование целлюлазы и белков из остатков целлюлозы. Сельскохозяйственные отходы. 1984;11:105–113. [Google Scholar]
13. Эль-Тарабили К.А., Сиваситхампарам К. Нестрептомицетовые актиномицеты как агенты биоконтроля передающихся через почву грибковых патогенов растений и как стимуляторы роста растений. Почва Биол Биохим. 2006; 38: 1505–1520. [Google Scholar]
14. Фор Д., Дешам А.М. Влияние бактериальной инокуляции на инициирование компостирования виноградной мезги. Биоресурсная технология. 1991; 37: 235–238. [Google Scholar]
15. Fu X, Huang X, Liu P, Lin L, Wu G, Li C, Feng C, Hong Y. Клонирование и характеристика новой маннаназы из Paenibacillus sp. БМЭ-14. J Microbiol Biotechnol. 2010;20:518–524. [PubMed] [Google Scholar]
16. Gibb GD, Ordaz DE, Strohl WR. Перепроизводство внеклеточной протеазной активности Streptomyces C5-A13 при периодической ферментации с подпиткой. Приложение Microbiol Biotechnol. 1989; 31: 119–124. [Google Scholar]
17. Grabski AC, Jeffries TW. Получение, очистка и характеристика β-(1–4)-эндоксиланазы Streptomyces roseiscleroticus . Appl Environ Microbiol. 1991;57:987–992. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
18. Haruta S, Cui Z, Huang Z, Li M, Ishii M, Igarashi Y. Создание стабильного микробного сообщества с высокой способностью к деградации целлюлозы. Приложение Microbiol Biotechnol. 2002; 59: 529–534. [PubMed] [Google Scholar]
19. Heck JX, Hertz PF, Ayub MAZ. Производство целлюлазы и ксиланазы выделенными штаммами Amazon Bacillus с использованием культивирования в твердой фазе на основе промышленных остатков сои. Браз Дж Микробиол. 2002; 33: 213–218. [Академия Google]
20. Heuer H, Krsek M, Baker P, Smalla K, Wellington EMH. Анализ сообществ актиномицетов путем специфической амплификации генов, кодирующих 16S рРНК, и гель-электрофоретического разделения в денатурирующих градиентах. Appl Environ Microbiol. 1997;63:3233–3241. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
21. Holtz C, Kaspari H, Klemme J.-H. Продукция и свойства ксиланаз из термофильных актиномицетов. Антони ван Левенгук. 1991; 59: 1–7. [PubMed] [Академия Google]
22. Hong T.-Y, Cheng C.-W, Huang J.-W, Meng M. Выделение и биохимическая характеристика эндо-1,3-β-глюканазы из Streptomyces sioyaensis , содержащего C-концевое семейство 6 углеводсвязывающий модуль, который связывается с 1,3-β-глюканом. Микробиология. 2002; 148:1151–1159. [PubMed] [Google Scholar]
23. Kansoh AL, Nagieb ZA. Ферменты ксиланазы и маннаназы из Streptomyces galbus NR и их использование в биоотбеливании крафт-целлюлозы из хвойной древесины. Антони ван Левенгук. 2004; 85: 103–114. [PubMed] [Академия Google]
24. Kato S, Haruta S, Cui ZJ, Ishii M, Yokota A, Igarashi Y. Clostridium straminisolvens sp. nov., умеренно термофильная, аэротолерантная и целлюлозолитическая бактерия, выделенная из бактериального сообщества, разлагающего целлюлозу. Int J Syst Evol Microbiol. 2004;54:2043–2047. [PubMed] [Google Scholar]
25. Kato S, Haruta S, Cui ZJ, Ishii M, Igarashi Y. Стабильное сосуществование пяти бактериальных штаммов как сообщества, разлагающего целлюлозу. Appl Environ Microbiol. 2005;71:7099–7106. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
26. Khianngam S, Tanasupawat S, Akaracharanya A, Kim KK, Lee KC, Lee J-S. Cohnella thailandensis sp. nov., ксиланолитическая бактерия из почвы Таиланда. Int J Syst Evol Microbiol. 2010;60:2284–2287. [PubMed] [Google Scholar]
27. Kleyn JG, Wetzler TF. Микробиология отработанного грибного компоста и его пыли. Может J Microbiol. 1981; 27: 748–753. [PubMed] [Google Scholar]
28. Лейн DJ. Секвенирование 16S/23S рРНК. В: Stackebrandt E, Goodfellow M, редакторы. Методы нуклеиновых кислот в бактериальной систематике. Джон Уайли и сыновья; Нью-Йорк: 1991. стр. 115–175. [Google Scholar]
29. Маэда К., Ханадзима Д., Мориока Р., Осада Т. Характеристика и пространственное распределение бактериальных сообществ в кучах для компостирования навоза крупного рогатого скота с пассивной аэрацией. Биоресурсная технология. 2010;101:9631–9637. [PubMed] [Google Scholar]
30. Maki M, Leung KT, Qin W. Перспективы использования бактерий, продуцирующих целлюлазу, для биоконверсии лигноцеллюлозной биомассы. Int J Biol Sci. 2009; 5: 500–516. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
31. Malherbe S, Cloete TE. Биодеградация лигноцеллюлозы: основы и приложения. Rev Environ Sci Biotechnol. 2002; 1:105–114. [Google Scholar]
32. Мальвия Н., Ядав А.К., Яндигери М.С., Арора Д.К. Разнообразие культивируемых Streptomycetes из системы возделывания пшеницы плодородных регионов Индо-Гангской равнины, Индия. World J Microbiol Biotechnol. 2011; 27:1593–1602. [Google Scholar]
33. Маккарти А.Дж., Уильямс С.Т. Актиномицеты как агенты биодеградации в окружающей среде: обзор. Ген. 1992;115:189–192. [PubMed] [Google Scholar]
34. Навани Н.Н., Пракаш Д., Кападнис Б.П. Экстракция, очистка и характеристика антиоксиданта из морских отходов с использованием смеси протеазы и хитиназы. World J Microbiol Biotechnol. 2010;26:1509–1517. [Google Scholar]
35. Поли М., Кегстра К. Углеводы клеточной стенки и их модификация как ресурс для биотоплива. Плант Дж. 2008; 54: 559–568. [PubMed] [Google Scholar]
36. Педерсен М., Холленстед М., Ланге Л., Андерсен Б. Скрининг ферментов, разлагающих целлюлозу и гемицеллюлозу, из грибов рода 9.0007 Улокладиум . Int Biodeterior Biodegrad. 2009; 63: 484–489. [Google Scholar]
37. Перес Х., Муньос-Дорадо Х., де ла Рубиа Т., Мартинес Х. Биоразложение и биологическая обработка целлюлозы, гемицеллюлозы и лигнина: обзор. Интер микробиол. 2002; 5:53–63. [PubMed] [Google Scholar]
38. Растоги Г., Бхалла А., Адхикари А., Бишофф К.М., Хьюз С.Р., Кристофер Л.П., Сани Р.К. Характеристика термостабильных целлюлаз, продуцируемых Bacillus и Geobacillus штаммов. Биоресурсная технология. 2010; 101:8798–8806. [PubMed] [Google Scholar]
39. Ривас Р., Гарсия-Фрайле П., Матеос П.Ф., Мартинес-Молина Э., Веласкес Э. Paenibacillus Cellulosilyticus sp. nov., целлюлолитическая и ксиланолитическая бактерия, выделенная из филлосферы прицветника Phoenix dactylifera . Int J Syst Evol Microbiol. 2006; 56: 2777–2781. [PubMed] [Google Scholar]
40. Санчес С. Лигноцеллюлозные остатки: биодеградация и биоконверсия грибами. Биотехнология Adv. 2009 г.;27:185–194. [PubMed] [Google Scholar]
41. Shi P, Tian J, Yuan T, et al. Paenibacillus sp. бифункциональная ксиланаза-глюканаза штамма Е18 с одним каталитическим доменом. Appl Environ Microbiol. 2010;76:3620–3624. [PMC бесплатная статья] [PubMed] [Google Scholar]
42. Сизова М.В., Искьердо Дж.А., Паников Н.С., Линд Л.Р. Расщепляющие целлюлозу и ксилан термофильные анаэробные бактерии из биокомпоста. Appl Environ Microbiol. 2011;77:2282–2291. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
43. Синаг А., Гюльбай С., Ускан Б., Гюллю М. Сравнительные исследования промежуточных продуктов, полученных гидротермической обработкой опилок и целлюлозы. J. Supercrit Fluids. 2009; 50: 121–127. [Google Scholar]
44. Сукумаран Р.К., Сингхания Р.Р., Панди А. Микробные целлюлазы — производство, применение и проблемы. J Sci Ind Res. 2005; 64: 832–844. [Google Scholar]
45. Takahashi R, Kusakabe I, Kusama S, Sakurai Y, Murakami K, Maekawa A, Suzuki T. Структуры глюкоманно-олигосахаридов из продуктов гидролиза конжакового глюкоманнана, продуцируемого β-маннаназой из Streptomyces sp. Сельскохозяйственная биохимия. 1984; 48: 2943–2950. [Google Scholar]
46. Тамура К., Дадли Дж., Ней М., Кумар С. MEGA4: программное обеспечение для молекулярно-эволюционного генетического анализа (MEGA), версия 4. 0. Мол Биол Эвол. 2007; 24:1596–1599. [PubMed] [Google Scholar]
47. Teather RM, Wood PJ. Использование взаимодействия конго красный-полисахарид в подсчете и характеристике целлюлозолитических бактерий из рубца крупного рогатого скота. Appl Environ Microbiol. 1982; 43: 777–780. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
48. Тен Л.Н., Им В.-Т., Ким М.-К., Канг М.С., Ли С.-Т. Разработка чашечного метода скрининга микроорганизмов, разрушающих полисахариды, с использованием смеси нерастворимых хромогенных субстратов. J. Микробиологические методы. 2004; 56: 375–382. [PubMed] [Google Scholar]
49. Théberge M, Lacaze P, Shareck F, Morosoli R, Kluepfel D. Очистка и характеристика эндоглюканазы из Streptomyces lividans 66 и последовательность ДНК гена. Appl Environ Microbiol. 1992;58:815–820. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
50. Томпсон Дж. Д., Гибсон Т. Дж., Плевняк Ф., Жанмужен Ф., Хиггинс Д. Г. Оконный интерфейс Clustal_X: гибкие стратегии множественного выравнивания последовательностей с помощью инструментов анализа качества. Нуклеиновые Кислоты Res. 1997; 24:4876–4882. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
51. Туомела М., Викман М., Хатакка А., Итаваара М. Биодеградация лигнина в среде компоста: обзор. Биоресурсная технология. 2000; 72: 169–183. [Академия Google]
52. Тернер С., Прайер К.М., Мяо В.П.В., Палмер Д.Д. Изучение глубоких филогенетических взаимоотношений между цианобактериями и пластидами с помощью анализа последовательности малых субъединиц рРНК. Дж Эукариот микробиол. 1999; 46: 327–338. [PubMed] [Google Scholar]
53. Ваз-Морейра И., Фариа С., Нобре М.Ф., Шуманн П., Нунес О.К., Манайя К.М. Paenibacillus humicus , sp. nov., выделенный из компоста птичьей подстилки. Int J Syst Evol Microbiol. 2007; 57: 2267–2271. [PubMed] [Google Scholar]
54. Ваз-Морейра И., Фигейра В., Лопес А.Р., Пукалл Р., Шпреер С., Шуманн П., Нунес О.К., Манайя К.М. Paenibacillus residui sp. nov., выделенный из компоста городских отходов. Int J Syst Evol Microbiol. 2010;60:2415–2419. [PubMed] [Google Scholar]
55. Веласкес Э., де Мигель Т., Поса М., Ривас Р., Росселло-Мора Р., Вилла Т.Г. Paenibacillus favisporus sp. nov., ксиланолитическая бактерия, выделенная из фекалий коров. Int J Syst Evol Microbiol. 2004; 54: 59–64. [PubMed] [Google Scholar]
56. Waldron CR, Becker-Vallone CA, Eveleigh DE. Выделение и характеристика целлюлолитических актиномицетов Microbispora bispora . Приложение Microbiol Biotechnol. 1986; 24: 477–486. [Google Scholar]
57. Watabe M, Rao JR, Xu J, Millar BC, Ward RF, Moore JE. Идентификация новых эубактерий из отходов отработанного грибного компоста (SMC) с помощью типирования последовательности ДНК: экологические соображения утилизации на сельскохозяйственных угодьях. Управление отходами. 2004; 24:81–86. [PubMed] [Google Scholar]
58. Wen Z, Liao W, Chen S. Производство целлюлазы/β-глюкозидазы смешанной культурой грибов Trichoderma reesei и Aspergillus phoenicis на молочном навозе. Процесс биохим. 2005;40:3087–3094. [PubMed] [Google Scholar]
59. Xuesong L, Wang Z, Dai J, Zhang L, Fang C. Cohnella damensis sp. nov., подвижные ксиланолитические бактерии, выделенные из низкогорного района Тибета. J Microbiol Biotechnol. 2010;20:410–414. [PubMed] [Google Scholar]
60. Юн М.-Х, Тен Л.Н., Им В.Т. Cohnella panacarvi sp. nov., ксиланолитическая бактерия, выделенная из почвы, выращивающей женьшень. J Microbiol Biotechnol. 2007;17:913–918. [PubMed] [Google Scholar]
61. Чжан З., Шварц С., Вагнер Л., Миллер В. Жадный алгоритм для выравнивания последовательностей ДНК. J Компьютерная биология. 2000;7:203–214. [PubMed] [Google Scholar]
дель Прадо; 1988 Пожарная машина PSE Renault B90 Pompiers De Paris; Excelle – маленькие колеса
Дом
—
дель Прадо; 1988 Пожарная машина PSE Renault B90 Pompiers De Paris; Отлично в упаковке
Название по умолчанию — 6,99 фунтов стерлингов
Добавить в список желаний
Твитнуть
Приколи это
- Модель автомобиля
- Информация о доставке
- del Prado: № 16
- 1988 PSE Renault B90 Fire Engine
- Sapeurs Pompiers De Paris
- del Prado World Fire Engines Series #16
- Бывшая коллекционная модель; в отличном состоянии, в оригинальной упаковке
- Коллекционная литая модель в масштабе 1:64
- Нажмите «Информация о доставке» выше, чтобы узнать стоимость доставки. Вес в упаковке: 217 г
034:06/211020
Примечание для клиентов за пределами только в Великобритании: Наши продукты поставляются с неоплаченными пошлинами, что может привести к задержкам таможенного оформления и дополнительным сборам местных налогов, пошлин и сборов за обработку.
Нажмите на картинку, чтобы увидеть ее в полном размере
Почтовые расходы и вес посылки
Стоимость доставки зависит от общего веса всех приобретенных товаров. Процесс оформления заказа суммирует вес и рассчитывает стоимость доставки. Мы указали вес каждого товара в его описании, чтобы вы могли следить за покупками и рассчитывать стоимость доставки своих покупок.
В таблице ниже перечислены доступные услуги и стоимость для каждого веса и зоны, все цены указаны в фунтах стерлингов Великобритании:
Сервис | До 100 г | 100-250 г | 250-500 г | 500-1000 г | 1000-1500 г | 1500-2000 г | 2000–3000 г | 3000–4000 г | 4000 г-20 кг | |
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
Великобритания круглосуточно | 4,75 фунта стерлингов | 4,75 фунта стерлингов | 4,75 фунта стерлингов | 4,75 фунта стерлингов | 5,45 фунтов стерлингов | 6,45 фунтов стерлингов | 10,95 фунтов стерлингов | 12,95 фунтов стерлингов | 17,45 фунтов стерлингов | |
Международный отслеживаемый | 7,95 фунтов стерлингов | 11,95 фунтов стерлингов | 11,95 фунтов стерлингов | 13,95 фунтов стерлингов | 18,95 фунтов стерлингов | 25,95 фунтов стерлингов | 39,95 фунтов стерлингов | 49,95 фунтов стерлингов | 59,95 фунтов стерлингов |
Листайте вправо, чтобы увидеть все цены